PRRS 약독화 생독 백신(MLV)은 광범위하게 반응하는 T세포(역자 주; 면역세포 중 하나)를 통해 이종 야외 감염에 대한 부분적인 방어 효과를 제공할 가능성이 높다. 따라서 '인겔백 PRRS(Ingelvac PRRS® MLV)' 단독 투여와 써코플렉스(Ingelvac CircoFLEX®)와 재구성된 백신의 효능을 평가하기 위해 강력한 세포매개 면역반응 유도 능력과 바이러스 공격 시험에 대한 방어 효과 제공 능력을 평가했다. 이를 위해 본 연구는 전통적인 면역 분석법과 기계 학습 소프트웨어를 모두 활용하였다. 두 백신군 모두 '모의 백신 접종군(mock vaccinated group; 비백신)' 대비 혈중 바이러스량, 폐 내 바이러스 부하, 육안적 및 현미경적 폐 병변이 유의하게 감소하였으며 일당증체량도 개선되었다. 폐 내 T세포 분석 결과, 중화항체가 없는 상태에서도 PRRS 바이러스 감염에 대한 강력한 반응이 관찰되어 폐 내 바이러스가 현저히 제거되는 것으로 나타났다. [논문 원문(바로보기), T cell-mediated clearance of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) f
PRRS바이러스(PRRSV)는 돼지 번식 실패의 주요 원인이며, 새롭게 출현한 NADC34 유사 균주는 강화된 병원성과 후기 유산과의 연관성으로 인해 점점 더 많은 관심을 받고 있다. 본 연구에서는 PRRSV 음성 임신 암퇘지 8마리를 대상으로 한국에서 분리한 NADC34 유사 균주인 'SNUVP231106'의 병원성을 평가했다. 감염된 동물은 뚜렷한 호흡기 증상이 없었음에도 불구하고 발열, 식욕부진, 무기력증을 보였으며, 한 마리는 안락사 처치가 필요했다. 혈청 TNF-α와 IFN-α 수치는 대조군에 비해 유의하게 상승했다. 감염시킨 암퇘지 4마리 모두 임신 110~112일에 조기 분만했으며, 51마리의 태아 모두 사산되었다(자가분해, 부패, 미라화 형태 포함). 실시간 정량중합효소연쇄반응(qPCR) 검사 결과, 감염 후 4~7일차 사이에 바이러스혈증이 나타났고, 7일차에 혈청전환이 확인되었다. 특히, 태아 혈청의 67%와 흉선 검체의 95%에서 PRRSV RNA가 검출되었다. 흉선에서 더 높은 바이러스 부하가 관찰되었다. 조직병리학적 변화는 뚜렷하지 않았으나, 면역조직화학(IHC)을 통해 흉선 대식세포에서 PRRSV 항원이 검출되었다. 본 연구에서 한국에
돼지 번식군 내 마이코플라스마 하이오뉴모니아에(Mycoplasma hyopneumoniae; 유행성 폐렴) 상태를 분류하기 위한 표준화된 체계가 개발되었다; 통제되지 않은 양성(I), 통제된 양성(II), 잠정 음성(III), 음성(IV). 이는 돈군의 노출 및 배출 상태를 판단하기 위한 일련의 진단 지침을 정의함으로써 이루어졌다. 이 분류 체계는 마이코플라스마 하이오뉴모니아에의 역학적·생태학적 특성에 기반하며, 현재 현장에서 시행 중인 통제 및 근절 관행을 반영한다. 학계, 산업계, 돼지 수의사, 미국돼지수의사협회(AASV), 국가돼지고기위원회대표로 구성된 작업 그룹이 개발하였으며, 2019년 10월 2일 AASV 이사회에서 승인되었다. 명확하고 간결한 용어 사용은 모든 이해관계자 간 의사소통을 용이하게 할 것이다. [논문 원문(바로보기), Establishing Mycoplasma hyopneumoniae herd status classification criteria for breeding herds, Maria J. Clavijo(Iowa State University), AASV, 2020] 번역 돼지와사람(pigpeople100@gmail.com)
돼지 번식군 내 마이코플라스마 하이오뉴모니아에(Mycoplasma hyopneumoniae; 유행성 폐렴) 상태를 분류하기 위한 표준화된 체계가 개발되었다; 통제되지 않은 양성(I), 통제된 양성(II), 잠정 음성(III), 음성(IV). 이는 돈군의 노출 및 배출 상태를 판단하기 위한 일련의 진단 지침을 정의함으로써 이루어졌다. 이 분류 체계는 마이코플라스마 하이오뉴모니아에의 역학적·생태학적 특성에 기반하며, 현재 현장에서 시행 중인 통제 및 근절 관행을 반영한다. 학계, 산업계, 돼지 수의사, 미국돼지수의사협회(AASV), 국가돼지고기위원회대표로 구성된 작업 그룹이 개발하였으며, 2019년 10월 2일 AASV 이사회에서 승인되었다. 명확하고 간결한 용어 사용은 모든 이해관계자 간 의사소통을 용이하게 할 것이다. [논문 원문(바로보기), Establishing Mycoplasma hyopneumoniae herd status classification criteria for breeding herds, Maria J. Clavijo(Iowa State University), AASV, 2020] 번역 돼지와사람(pigpeople100@gmail.com)
장기간의 PCV2 감염 및/또는 PCV2a 및 PCV2b 유전자형의 동시 감염은 '돼지 써코바이러스 관련 질병(PCVAD)'의 임상 발현에 영향을 미칠 수 있다. 이 가설을 평가하기 위해 11주령 SPF(특정 병원체 무균) 돼지 24마리를 4가지 처리군에 무작위로 배정했다; 음성 대조군, PCV2a 1회 접종, 1회 접종 후 동종 PCV2a 균주 재접종, 또는 이종 균주(PCV2a, PCV2b) 반복 접종. 돼지는 접종 후 140일(dpi)까지 매일 임상증상을 평가했다. 혈청 샘플은 dpi 0에서 14까지 이틀에 한 번씩 채취했고 그 이후에는 매주 채취했다. PCV2 접종 돼지는 dpi 2까지 바이러스혈증을 보였고, 18마리 중 13마리는 140dpi에서도 바이러스혈증을 유지했다. 처치군 간에 PCV2 바이러스혈증의 발병, 수준 또는 기간에 통계적 차이는 관찰되지 않았다. PCV2 항체는 14일에서 28일 사이에 검출되었고, 140일째까지 존재했다. 처치군 간 항체 반응에는 통계적 차이가 없었다. 본 연구에서 돼지는 높은 수준의 PCV2 항체가 존재함에도 불구하고 검출 가능한 조직 PCV2 항원 수치와 함께 장기간 바이러스혈증을 보였지만, 임상적 질환은 관찰
다양한 이유 전략(weaning strategies)이 'PRRS 바이러스(PRRSV)'의 하류순환(downstream; 사육단계별 전파)에 미치는 영향은 널리 알려져 있지 않다. 그러나 서로 다른 연령대의 돼지를 혼합하면 자돈사 구역에서 PRRSV 순환 위험이 증가하는 것으로 알려져 있다. 본 연구에서는 이유 시 혼합(MIX)을 시행한 세 농장과 이유 시 모두 전입/전출(AIAO)을 시행한 세 농장의 돼지를 대상으로 시료를 채취하였다. MIX는 저체중 자돈을 2주 동안 별도 시설에 다시 넣고 이후 배치에서 새로 이유한 자돈과 함께 자돈사로 옮기는 것을 포함한다. 각 농장의 네 배치의 돼지로부터, 이유부터 30kg까지 세 번씩 구강액 샘플을 채취하여 PRRSV 및 PRRSV 항체 검사를 실시했다. 이유 시 혼합(MIX)을 시행한 무리는 AIAO를 시행한 무리에 비해 구강액에서 PRRSV 검출 위험이 8배 높았다. MIX 무리의 8개 배치에서 채취한 총 41개의 구강액 샘플과 AIAO 무리의 2개 배치에서 채취한 5개의 구강액 샘플에서 PRRSV 양성 반응이 나왔다. 이유돈의 구강액 샘플에서 PRRSV ELISA S/P 비율은 AIAO 무리의 대부분 배치에서
부산의 사육돼지에서 '일본뇌염 바이러스(JEV)'와 '돼지 파보바이러스(PPV)'의 항체 보유율을 조사하기 위해 2024년 1월부터 11월까지 9개 돼지 농장에서 439개의 혈액 샘플을 수집했다. JEV의 전체 항체 보유율은 15.4%로 매우 낮은 백신 접종률을 나타냈다. JEV 항체 보유율은 계절과 지역에 따라 상당히 달랐으며 모돈(39.3%)에서 비육돈(11.6%)에 비해 더 높은 항체 보유율이 관찰되었고 가을(34.7%)에 최고조에 달했다. 이와 대조적으로 PPV의 전체 항체 보유율은 98.6%로 매우 높은 백신 접종률을 나타내었다. PPV 항체 보유율은 모든 그룹과 계절에 걸쳐 지속적으로 높았으며, 이는 백신 접종이 모돈을 대상으로 집중적으로 이루어지기 때문으로 판단된다. 모돈의 항체 보유율은 100%였다. 지역 및 농장 단위에서 JEV 항체 보유율의 차이는 JEV에 대한 더욱 강화된 백신 접종 캠페인의 필요성을 시사한다. 본 연구는 JEV 및 PPV 발생 위험을 완화하고, 공중 보건 안전을 보장하며, 양돈 농가의 경제적 손실을 최소화하기 위해 강화된 백신 접종 전략, 정기적인 질병 모니터링, 그리고 환경 관리의 중요성을 강조한다. [논문 원문(바로보
돼지 써코바이러스 2형(porcine circovirus type 2, PCV2) 감염은 림프기관에서 림프구 소실 및 림프구 소엽의 조직구 대체와 같은 병리학적 특징적 병변을 유발한다. PCV2에 자연 감염된 돼지에서는 '괴사성 림프절염'도 관찰될 수 있다. 2003년부터 2010년까지 제주도에서 '돼지써코바이러스 연관 질병(PCVAD)'에 감염된 돼지 20마리(6.4%)에서 '괴사성 림프절염'이 관찰되었다. 가장 두드러진 조직병리학적 병변은 경증에서 중증의 '응고괴사'였다. 조직구 및 다핵거대세포 내에서도 세포질 내 바이러스 봉입체가 발견되었다. 출혈 및 혈관 내 혈전증을 특징으로 하는 현저한 혈관 손상이 있었다. 면역조직화학 검사 결과, 괴사성 림프절염을 동반한 PCVAD 돼지에서 병리학적 병변이 더 심한 것으로 나타났다. 괴사성 림프절염을 동반한 PCVAD 돼지에서 PCV2 항원 발현이 더 강하게 나타났다. 본 연구 결과는 이러한 돼지에서 림프구 괴사는 과도한 PCV2 항원 부담으로 인한 혈전을 동반한 혈관 손상과 밀접한 관련이 있음을 시사한다. 따라서 중증 PCV2 감염 돼지에서 괴사성 림프절염은 PCVAD의 특이 병변 유형 중 하나로 고려되어야 한다
ASFV-G-ΔI177L은 상용 백신에 도입된 ASF 바이러스(ASFV) 약독화 생독 균주이다. 본 연구는 임신모돈에서의 안전성과 생체 내 유전적 안정성을 조사하였다. 임신모돈 2마리에 ASFV-G-ΔI177L을 접종한 결과, 한 마리에서 중등도의 ASF 관련 임상증상이 나타났다. 번식성적 측면에서, 자돈의 43%가 사산되었으며 생존한 자돈들은 ASF 특이적 임상증상을 보였고 바이러스혈증이 발생하였다. 연구 종료 시점까지 생존한 비율은 17%에 불과했다. 돼지를 통한 전파 과정에서 ASFV-G-ΔI177L은 3차 및 4차 전파 시 심각한 ASF 특이적 임상증상과 함께 바이러스혈증 증가를 동반하는 등 병원성 회복을 보였다. 전체 유전체 시퀀싱을 통해 C257L 돌연변이가 증식 적합성과 독성 증가의 잠재적 원인으로 확인되었다. 본 연구 결과는 ASFV-G-ΔI177L이 유전적으로 안정적이지 않아 ASF 백신 사용에 안전하지 않음을 보여주며, ASF 백신 후보물질은 임신 동물에서 안전성 시험을 거쳐야 함을 시사한다. [논문 원문(바로보기), African swine fever virus vaccine strain Asfv-G-∆I177l reverts to vir
PRRS는 대한민국의 돼지산업에 막대한 경제적 손실을 초래하는 전염병이다. PRRS 바이러스(PRRSV) 유형에 대한 감시는 맞춤형 방제 조치를 수립하는 데 중요하다. 본 연구는 PRRSV의 다양성의 정도를 파악하는 것이다. 이를 위해 2018년부터 2022년까지 5,062개의 혈청 및 조직 샘플을 수집하였다. PRRSV의 ORF5 서열 분석 결과, subgroup A(42%) 우세했으며, 이어서 리니지 1(21%), 리니지 5(14%), 리니지 한국 C(LKC, 9%), 리니지 한국 B(LKB, 6%), subtype 1C(5%) 순으로 나타났다. 고병원성 리니지 1(NADC30/34/MN184)과 리니지 8도 검출되었다. 이들 바이러스는 일반적으로 변이하거나 다른 바이러스와 재조합한다. PRRSV-1(유럽형)에서는 ORF5 및 비구조 단백질 2(NSP2) 결실 패턴의 변이가 적었다. PRRSV-2(북미형)에 속하는 여러 균주는 NSP2 결실 및 ORF5 서열에서 차이를 보였다. PRRSV-1 subtype 1C 및 PRRSV-2 리니지 5와 비슷한 '백신 유사 분리주(Similar vaccine-like)'도 발견되었다. 이 바이러스는 현장에서 독립적으로
ASF는 한국의 돼지산업에 중대한 사회경제적 타격을 주는 질병이다. 본 연구는 ASF 발생이 보고된 농장에서 감염된 것으로 보이는 돼지의 ASF 바이러스(ASFV) 혈청양성률을 확인하는 것을 목표로 했다. 이를 위해 한국에서 발생한 ASF 발생 사례(2019–2024년)에서 총 2232개의 혈청을 수집하였다. ASFV 항체 검출을 위해 두 가지 '효소결합면역흡착분석법(ELISA)' 키트를 사용했으며, 세계동물보건기구(WOAH)의 육상동물 진단검사 및 백신 매뉴얼에서 권장하는 방법에 따라 '면역과산화효소검사(IPT)'를 확인 검사로 실시하였다. 또한, 야생멧돼지 개체군 내 ASF 발생 집중 지역을 파악하고, 해당 집중 지역과 ASF 항체 양성 가축 농장 간의 공간적 관계를 평가하기 위해 DBSCAN(Density-Based Spatial Clustering of Applications with Noise) 모델을 이용한 공간 클러스터링을 수행하였다. 그 결과, 항체는 2020년 화천에서 처음 검출되었으나, 2024년까지 ASFV에 대한 검출 가능한 항체를 보유한 돼지는 1.43%에 불과했다. 비록 이 비율은 여전히 낮지만, 항체 양성 돼지의 수는 점차 증가하고
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